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型号:
鸭瘟病毒(DPV)PCR检测试剂盒
描述:

鸭瘟病毒(DPV)PCR检测试剂盒对鸭瘟病毒基因组保守区设计特异性引物和探针,用荧光 PCR 技术对鸭瘟病毒的核酸进行体外扩增检测,用于对可疑感染者的病原学诊断。

  • 厂商性质

    生产厂家
  • 更新时间

    2025-03-18
  • 访问量

    60
详细介绍
品牌烜雅生物货号XY-D-0115
规格50T/盒供货周期现货
主要用途科研应用领域化工,生物产业
英文名称Duck Plague Virus Detection Kit保存条件-20℃±5℃,避光保存
有效期12个月

产品简介:

鸭瘟,又称鸭病毒性肠炎,是由疱疹病毒科鸭瘟病毒(Duck Plague Virus, DPV) 引起的一种急性(有时呈慢性)鸭、鹅和天鹅接触性传染病。其特征为体温升高,两腿麻痹,下痢,流泪和部分病鸭头颈肿大。食道粘膜有小出血点,并有灰黄色假膜覆盖或溃疡,泄殖腔粘膜充血出血水肿和假膜覆盖。肝有不规则大小不等的出血点和坏死灶。本病传播迅速,发病率和死亡率高,严重威胁养鸭业发展。

本试剂盒适用于检测病鸭血液、口腔伪膜及溃疡处粘液、肝、脾、肾等组织样品   等样本中的鸭瘟病毒,用于鸭瘟病毒感染的辅助诊断。


产品特点:

一、严格的质控体系

所有试剂盒从原料到成品都经过严格的质量控制,确保每一盒试剂盒都具有稳定可靠的质量,让您的检测结果更可信。

二、高灵敏度

产品经过不断优化,具有出色的灵敏度,能够检测到极微量的鸭瘟病毒核酸,不放过任何潜在的感染风险。

三、便捷操作

综合各项指标特性,研发出操作便捷的试剂盒。从样本制备到结果分析,每一步都有清晰的操作指南,即使是新手也能轻松上手。

四、多样的检测验证样本

该试剂盒经过多种样本的检测验证,适用于血液、口腔伪膜及溃疡处粘液、肝、脾、肾等多种常见样本,满足不同的检测需求。

五、个性化定制服务

专业的研发团队可为您提供个性化的定制服务,根据您的特殊需求进行产品优化和调整,为您提供更贴合实际的检测方案。

六、丰富的产品线

除了鸭瘟病毒(DPV)PCR检测试剂盒,我们还提供Elisa试剂盒以及其它快检试剂盒,满足您在不同领域的检测需求。

七、完善的售前售后服务

我们拥有完善专业的售前售后服务团队,在您购买前为您提供详细的产品咨询和技术支持,购买后为您解决使用过程中遇到的任何问题,让您无后顾之忧。


产品参数:

产品规格

50T/盒,可满足一定规模的检测需求。

检测方法

实时荧光PCR,具有快速、准确、灵敏等优点。

适用仪器

ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

标本采集

在发病早期,无菌采集病鸭血液或刮取口腔伪膜及溃疡处粘液;在动物死亡后,无菌采取肝、脾、肾等组织样品。

保存和运输

上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。


使用方法:

1.样品处理(样本处理区)

1.1样本前处理

组织样品:每份组织分别从 3 个不同的位置称取样品约 1g,手术-剪剪碎混匀后取0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;粘液直接取 100μL 提取

1.2DNA 提取

推荐采用上海烜雅生物科技有限公司生产的 DNA-提取试剂盒(离心柱提取法),请按照试剂盒说明书进行操作。

2.试剂配制(试剂准备区)

根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满 7 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:

试剂DPV 反应液酶液

用量(样本数为 N)20μL1μL

将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,21uL/管。

3.加样(样本处理区)

将步骤 1 提取的 DNA、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀,短暂离心。

4.PCR 扩增(核酸扩增区)

4.1将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;

4.2设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;

荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye) NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。

4.3推荐循环参数设置:

步骤循环数温度时间收集荧光信号

11 cycle95℃10min

240 cycles94℃15sec

55℃30sec

5.结果分析判定

5.1结果分析条件设定

设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。

5.2结果判断

阳性:检测通道 Ct 值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线;

可疑:检测通道 35<Ct 值≤38,建议重复检测,如果检测通道仍为 35<Ct 值≤38, 且曲线有明显的增长曲线,判定为阳性,否则为阴性;

阴性:样本检测结果 Ct 值>38 或无 Ct 值。

6.质控标准

阴性质控品:Ct>38 或无 Ct 值显示;

阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。

7.检测方法的局限性

7.1样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;

7.2样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;

7.3阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;

7.4病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;

7.5不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;

7.6试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定   量检测不准确的结果;

7.7本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。


注意事项:

1.所有操作严格按照说明书进行;

2.试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完-全混匀并短暂离心;

3.反应液应避光保存;

4.反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;

5.使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;

6.样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;

7.实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;

8.试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

9.本产品仅供科研。

选择我们的鸭瘟病毒(DPV)PCR检测试剂盒,就是选择精准、高效、可靠的检测方案,为您的科研实验保驾护航!

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